产品描述
细胞凋亡的一个显著特点是细胞染色体DNA的降解，这是一个较普遍的现象。这种降解非常特异并有规律，所产生的不同长度的DNA片段约为bp-bp的整数倍，表现为琼脂糖凝胶电泳中呈现特异的梯状Ladder图谱，本试剂盒采用TUNEL法，应用末端脱氧核糖核苷酸转移酶(TerminalDeoxynucleotidylTransferase,TdT)在凋亡细胞断裂DNA的′-OH末端催化掺入EZ-dUTP。EZ-dUTP标记的DNA可以用荧光显微镜直接观察或者用流式细胞仪定量。TUNEL法可以选择性的检测凋亡细胞，而非坏死细胞或因辐照和药物治疗而造成的DNA链断裂的细胞。TUNEL实验中，TdT酶催化dUTP掺入断裂的DNA链的′-OH末端。抗原标记的dUTP（如digoxin-dUTP、生物素-dUTP），因为它可以直接进行原位检测，是一种更快速、直接的检测手段。
订购信息
产品组分
运输与保存
蓝冰运输。-20℃避光保存，有效期24个月。：避免反复冻融。
实验材料（自备）
PBS缓冲液（1×，pH~7.4）
0.2%TritonX-（PBS配制）
0.1%TritonX-（PBS配制，其中含5mg/mLBSA）
4%多聚甲醛（PBS配制）
免疫组化笔
脱蜡溶剂（石蜡切片样本）
石蜡切片处理相关试剂
抗荧光淬灭封片剂
ddH2O
使用方法
一、实验设计
1.阳性对照（可选）：DNaseI处理制备阳性对照载玻片。DNaseI可以消化单链或双链DNA产生单脱氧核苷酸或单链或双链的寡脱氧核苷酸的核酸内切酶，人为造成细胞凋亡。
2.阴性对照（可选）：使用不含TdTEnzyme的TUNELReactionBuffer，用ddH2O替代TdTEnzyme。
.实验处理组。
4.实验对照组。
二、实验步骤
1.样本准备：
对于贴壁细胞或细胞涂片
(1)PBS清洗1次。：如果担心细胞涂片的细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。
(2)固定：加入适量4%多聚甲醛（PBS配制），室温固定0min。PBS清洗2次。
()通透：加入适量0.2%TritonX-（PBS配制），室温通透20min。PBS清洗2次。
(4)转步骤2.TUNEL反应。
对于悬浮细胞或细胞悬液
(1)收集细胞（-5×个细胞），0rpm离心5min，PBS清洗2次。
(2)固定：加入适量4%多聚甲醛（PBS配制）充分重悬细胞，4℃固定0min。0rpm离心5min，PBS清洗2次。
()通透：加入适量0.2%TritonX-（PBS配制），室温通透20min。0rpm离心5min，PBS清洗2次。
(4)转步骤2.TUNEL反应。
石蜡组织切片
(1)脱蜡与水化：将切片样本依次放入二甲苯I（10min）→二甲苯II（10min）→％乙醇I（5min）→％乙醇II（5min）→95%乙醇（5min）→90%乙醇（5min）→80%乙醇（5min）→70%乙醇（5min）→ddH2O冲洗5min，冲洗2次。：二甲苯有毒，易挥发，请在通风橱中进行此操作。
(2)用滤纸吸干切片样本周围液体，用免疫组化笔圈好样本轮廓，以便下游通透与标记。：若在后续实验操作中发现免疫组化笔画的轮廓圈被破坏，需及时补画。
()通透：按1:的比例，将2mg/mL的ProteinaseK溶液用PBS稀释至终浓度20μg/mL，在每个样本上滴加μL，使溶液覆盖全部样本区域，20-7℃孵育20min。：ProteinaseK可通透细胞膜和核膜，从而使后续步骤的染色试剂充分进入细胞核进行反应，提高标记效率。孵育时间过长会增加组织切片在后续洗涤步骤中从载波片上脱落的风险，过短则可能造成透性处理不充分，影响标记效率。为得到更好的结果，ProteinaseK的浓度、孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化。
(4)PBS漂洗切片2次，每次5min，用滤纸吸去多余的液体，将处理好的样本放在湿盒中保持湿润。：这一步必须把ProteinaseK洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
(5)转步骤2.TUNEL反应。
冰冻组织切片
(1)固定：取出冰冻切片，并回温至室温。加入适量4%多聚甲醛（PBS配制），室温固定0min。PBS漂洗2次，每次10min。：若是担心甲醛清洗不干净，影响最终染色效果。可在甲醛固定完成后加入适量2mg/mL甘氨酸清洗10min，中和残留的固定液，再进行PBS清洗。
(2)用滤纸吸干切片样本周围液体，用免疫组化笔圈好样本轮廓，以便下游通透与标记。：若在后续实验操作中发现免疫组化笔画的轮廓圈被破坏，需及时补画。
()通透：按1:的比例，将2mg/mL的ProteinaseK溶液用PBS稀释至终浓度20μg/mL，在每个样本上滴加μL，使溶液覆盖全部样本区域，20-7℃孵育20min。：ProteinaseK可通透细胞膜和核膜，从而使后续步骤的染色试剂充分进入细胞核进行反应，提高标记效率。孵育时间过长会增加组织切片在后续洗涤步骤中从载波片上脱落的风险，过短则可能造成透性处理不充分，影响标记效率。为得到更好的结果，ProteinaseK的浓度、孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化。
(4)PBS漂洗切片2次，每次5min，用滤纸吸去多余的液体，将处理好的样本放在湿盒中保持湿润。：这一步必须把ProteinaseK洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
(5)转步骤2.TUNEL反应。
阳性处理（仅阳性对照进行此步骤，其他样品直接进行TUNEL反应步骤）
(1)按1:10的比例用ddH2O将10×DNaseIBuffer稀释成1×DNaseIBuffer备用。
(2)滴加μL1×DNaseIBuffer到已处理的样本上，覆盖全部样本区域，室温平衡5min。
()用1×DNaseIBuffer以1:稀释DNaseI(2U/μL)至终浓度20U/mL的工作液。
(4)弃去Buffer，加入μL浓度为20U/mL的DNaseI工作液，室温孵育10min。
(5)弃去DNaseI工作液，PBS清洗2次。
(6)转步骤2.TUNEL反应。
2.TUNEL反应
配制TUNEL反应液（即用即配）：
对于贴壁细胞、细胞涂片或组织切片
(1)每个样本加入50μLTUNEL反应液，使反应液均匀覆盖样本。7℃避光孵育适宜的时间（细胞推荐染色时间0min-1h，组织染色时间推荐2h）。：50μLTUNEL反应液适合涂片、切片或96孔板（其他不同孔板可以适当调整TUNEL反应液体积，覆盖细胞即可）。如果待检测的样品为涂片、切片或在24孔板、12孔板或6孔板中，可以使用防蒸发膜，或自行尝试使用自封袋或者其它适当材料自行裁剪成比孔略小的圆形塑料片，滴加TUNEL反应液后覆盖在样品上，可以防止TUNEL反应液蒸发，并且使TUNEL反应液均匀覆盖样本。
(2)弃去TUNEL反应液，PBS漂洗2次，每次5min。：为了降低背景，PBS漂洗切片1次后，可再用0.1%TritonX-（PBS配制，其中含5mg/mLBSA）漂洗次，每次5min，这样游离的未反应的标记物可以清除较干净。
()（可选）每个样本加入适量浓度为5μg/mL的DAPI染液，室温避光孵育5min。染色完成后，弃去DAPI染液，PBS漂洗2次，每次5min。
(4)（可选）切片封片：将切片依次在纯水、70%乙醇、80%乙醇、90%乙醇、95%乙醇、无水乙醇中浸没5min，最后将切片样本置于染色缸中以新鲜的二甲苯浸泡，透明化处理2次，每次5min。脱水完成后，擦去切片周围的液体，每个样本滴加50μL抗荧光淬灭封片剂（抗荧光淬灭封片剂可能会不适用于某些染料，实验前建议进行预实验测试匹配性），盖上盖玻片，用镊子的钝端轻轻敲击盖玻片，去除气泡以使封片完全。
(5)用滤纸吸去多余的液体，向样本区域加μLPBS保持样本湿润，立即在荧光显微镜下观察。
对于悬浮细胞或细胞悬液
(1)每个样本管加入50μLTUNEL反应液轻轻重悬细胞，7℃避光孵育0~60min。每隔15min用微量移液器轻轻重悬细胞。
(2)0rpm离心5min，弃去TUNEL反应液，加入适量0.1%TritonX-（PBS配制，其中含5mg/mLBSA）轻轻重悬细胞，并清洗2次。
()每个样本管加入μL浓度为5μg/mL的DAPI染液，室温避光孵育5min。
(4)加入μLPBS重悬细胞，立即用流式细胞仪检测或进行涂片后在荧光显微镜下观察。
注意事项
1.本产品仅限于科学实验研究使用，不得用于临床诊断、治疗等领域。
2.使用前请将产品瞬时离心至管底，再进行后续实验。
.染色背景较重或非特异性着色明显时可适当减少染色时间。
4.实验时建议增加阴性对照和阳性对照组。
5.组分A使用时请佩戴口罩、手套，如接触皮肤，请立即用大量水冲洗。
6.荧光染料均存在淬灭问题，请尽量注意避光，以减缓荧光淬灭。
7.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
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